新生鼠心电呼吸系统
主要技术特点：
1.无创方式测量；
2.测量I和II导联，计算获得III、aVL、aVR、aVF导联；
3.同时可测量呼吸频率；
4.内置保温功能用于维持动物体温；
5.结构简单紧凑，使用USB供电，安全性高







iWorx生物信号采集分析系统由数据采集器、分析软件（LabScribe）以及各种放大器、传感器、导联线及电极组成。通过各种硬件之间的不同组合，可以对心电、脑电、肌电、眼电、有创血压、无创血压、dP/dt、体温、肌张力、呼吸波、呼吸流速、肺功能、组织血流、血管血流、神经电位、氧气含量、二氧化碳含量、血氧饱和度、心输出量、 脉搏容积、电刺激、诱发电位等参数进行观测和分析。

iWorx公司自成立以来，一直致力于让教育者和研究者Make Physiology Happen，使用这款仪器设备可以得到非常直观和可靠的实验结果。iWorx Data Aquisition & Analysis System 因其精密的检测硬件和强大的分析软件，获得国际许多学者的认可。经过多年的发展，其已成为目前国际上性价比非常高的生理信号采集分析仪器之一。

动物ECG/EMG 系统采用高精度电极，旨在采集动物高真表面心电及肌电信号，为心血管及神经科学等研究提供可靠的数据支持。

系统由数据采集器、生物电放大器、分析软件（LabScribe 基础软件及ECG 专用分析模块）及心电导联线和电极组成，可实现对多种动物进行多通道实时的ECG/EMG数据采集和分析。

主要特点：

· 适用于多种动物，大鼠、小鼠兔子、比格犬、猴子等动物，选择合适的适配器也适用于新生小鼠、斑马鱼；

· 对一个实验动物同时采集多通道ECG/EMG 信号，可获得6ECG6EMG、8EMG或12ECG 图像；

· 可选配多个生物电放大器，可实现对多只动物生物电进行采集，可同时获得128通道图像；

· 高精度电极，信号采集准确，失真度低；

· 可提供专用新生小鼠、斑马鱼心电测量系统；

· 可进行小动物的心脏电生理测量和研究；

· 专业ECG分析模块，精确计算分析ECG数据；
 

专业化，模块化，有多种心电测量系统可供选择。
 

大鼠小鼠心电测量系统
支持 4-8个EMG记录通道，或 EMG 和 ECG 记录的组合，设备针对记录啮齿类动物和其他小动物的数据进行了优化。
 

主要特点：

· 便携式，USB供电
· 颜色编码的引线
· 轻松导出
· 用于创建报告的内置日志
· 免费软件更新；
· 从单个受试者同时记录多个 EMG、ECG、EOG 通道；
· 包括 EMG 分析软件
 

心内心电图系统

· iWorx 提供用于研究啮齿动物心内电位的微创 8 电极导管；
· 心内电生理导管可以深入分析通过心脏的生物电势传播；
· 可同时记录 4 个局部心内电图；
· 同一导管可用于在记录电活动的同时为心脏起搏；
· 铂针电极也可用于记录动物的表面心电图；

大动物心电图/肌电图系统
· IX-BIO 可用作 4 或 8 通道生物电势放大器，允许从单个受试者同时记录多个通道的 EMG、ECG、EOG；

· 该记录仪配有 LabScribe 记录和分析软件，可直接连接到 Macintosh 或 Windows PC 上的 USB 端口；

· 测量 ECG、Lead I 和 Lead II 的 2 个通道允许 LabScribe 软件计算 Lead III、aVR、aVF 和 aVL；

· EMG 信号可以与 ECG 信号同时测量；
 

心电导联线：

其他心电测量系统：



小动物心电、肌电采集与分析系统参考文献：

1. Fang, Yin et al. “Micelle-enabled self-assembly of porous and monolithic carbon membranes for bioelectronic interfaces.” Nature nanotechnology vol. 16,2 (2021): 206-213. doi:10.1038/s41565-020-00805-z
2. Usseglio, Giovanni et al. “Control of Orienting Movements and Locomotion by Projection-Defined Subsets of Brainstem V2a Neurons.” Current biology : CB vol. 30,23 (2020): 4665-4681.e6. doi:10.1016/j.cub.2020.09.014
3. Marshall, Michael S et al. “Long-Term Improvement of Neurological Signs and Metabolic Dysfunction in a Mouse Model of Krabbe's Disease after Global Gene Therapy.” Molecular therapy : the journal of the American Society of Gene Therapy vol. 26,3 (2018): 874-889. doi:10.1016/j.ymthe.2018.01.009
4. Moyano, Ana Lis et al. “microRNA-219 Reduces Viral Load and Pathologic Changes in Theiler's Virus-Induced Demyelinating Disease.” Molecular therapy : the journal of the American Society of Gene Therapy vol. 26,3 (2018): 730-743. doi:10.1016/j.ymthe.2018.01.008
5. Chen, Shih-Heng et al. “An electrospun nerve wrap comprising Bletilla striata polysaccharide with dual function for nerve regeneration and scar prevention.” Carbohydrate polymers vol. 250 (2020): 116981. doi:10.1016/j.carbpol.2020.116981
6. Hérent, Coralie et al. “Absent phasing of respiratory and locomotor rhythms in running mice.” eLife vol. 9 e61919. 1 Dec. 2020, doi:10.7554/eLife.61919
7. Tsai, Pei-Jiun et al. “Xenografting of human umbilical mesenchymal stem cells from Wharton's jelly ameliorates mouse spinocerebellar ataxia type 1.” Translational neurodegeneration vol. 8 29. 5 Sep. 2019, doi:10.1186/s40035-019-0166-8
8. Lienemann, Samuel et al. “Stretchable gold nanowire-based cuff electrodes for low-voltage peripheral nerve stimulation.” Journal of neural engineering vol. 18,4 10.1088/1741-2552/abfebb. 25 May. 2021, doi:10.1088/1741-2552/abfebb
9. Gregory, Nicholas S et al. “ASIC3 Is Required for Development of Fatigue-Induced Hyperalgesia.” Molecular neurobiology vol. 53,2 (2016): 1020-1030. doi:10.1007/s12035-014-9055-410. Bowtell, Joanna L et al. “Acute physiological and performance responses to repeated sprints in varying degrees of hypoxia.” Journal of science and medicine in sport vol. 17,4 (2014): 399-403. doi:10.1016/j.jsams.2013.05.016
 

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