人骨肉癌细胞U-2os

细胞描述：   
人骨肉癌细胞U-2os来源于人骨肉癌，用于骨肉癌方面的致病机理方面研究。

人骨肉癌细胞U-2os增殖能力取决于细胞取材、培养技术、培养条件等综合因素。请按照正确的培养方法来解冻、传代，以此保证细胞具备良好的增殖能力，方便您的后继研究顺利进行。    

质量控制：   
本细胞经过了检测，不含有细菌、真菌、病毒（HIV、HBV、HCV）、支原体。 

培养条件：
37℃，5% CO2，PH值7.2~7.4，无菌恒温培养。

用途：   
本产品只提供给进一步的科研使用，不可应用于治疗等其他方面。

细胞相关操作（注意：细胞操作都需严格按照无菌操作）

收到复苏好的贴壁细胞的处理方法：
1. 先从外包装盒拿出细胞瓶，在细胞瓶表面喷一层酒精，并小心去掉封口膜；
2. 在显微镜下观察细胞状态，并确定是否染菌，如有染菌，请立即拍照，并将细胞丢掉；
3. 将培养瓶置于37°C，5% CO2的无菌培养箱中培养4-6小时；
4. 倒掉多余的培养基，留正常体积的培养基；
5. 重新将培养瓶置于37°C，5% CO2的无菌培养箱中培养过夜；
6. 第二天传代。

收到冻存细胞的处理方法：

1.37°C水浴预热培养基；
2.从液氮中取出细胞迅速放入37°C水浴快速解冻（解冻后不要继续暖细胞）；
3.在超净台中加入5ml培养基重悬细胞，1000rpm离心5min；
4.弃上清，加入5ml培养基重悬细胞后转入T25培养瓶中，轻轻晃匀；
5.置于37°C，5% CO2培养箱中培养(培养瓶盖没有透气孔的话,瓶盖不要拧太紧)；

6.第二天，用新鲜的培养基给细胞换液后继续培养。

细胞传代

1.当细胞融合度达到90%以上时，给细胞传代；

2.37°C水浴预热培养基；

3.在超净台中，弃培养基，加入2-5mlPBS清洗细胞后，再加入1ml胰酶消化细胞；

4.显微镜下观察到细胞变圆，有细胞开始脱离瓶壁时，加入5ml培养基终止消化；

5.用移液器轻轻吹下瓶壁上剩余的细胞，并轻轻吹打将细胞吹散；

6.将细胞移入离心管中，1000rpm离心5min；

7.弃上清，加入15-20ml的培养基重悬细胞后转入T75培养瓶中或按适当比例传到T25瓶中（确保细胞贴壁后融合度在25-50%之间），细胞密度在1×104 cells/cm2 (2.5×105 cells/T-25瓶），混匀细胞悬液，确保细胞均匀分布；

8.将培养瓶置于37°C，5% CO2的无菌培养箱中培养。

细胞冻存

1.37°C水浴预热培养基；

2.消化细胞后给细胞计数:

1)洗净晾干血小板计数板和盖玻片，将盖玻片完全覆盖计数区；

2)充分混匀细胞，取少量(0.1-0.5ml)细胞悬液与等体积的染色液台盼蓝混合，移液器吹吸混合均匀，用移液器取20ul混合液从盖玻片两端(与中间凹槽平行的两端)分别打入细胞，以细胞悬液刚好浸湿盖玻片为佳；

3)显微镜下，数四个计数区的总细胞数，无活性细胞染成蓝色，活细胞不被染色；

4)细胞密度=细胞总数/4×10000×2；

这里10000是不变的，因为计数的细胞是在体积为1mm×1mm×0.1mm即10-4cm3计数池内，1cm3=1ml，将四个计数区的细胞数除以4取平均数，乘2是补偿加等体积台盼蓝形成的稀释。

5)细胞活性=活细胞数/细胞总数×100%。

注:细胞密度高时，可调整细胞悬液和台盼蓝的比例，计数时乘以相应的稀释倍数即可。

3.当细胞密度达到传代密度且细胞活性在90%以上时，可以冻存细胞。

4.在超净台中将要冻存的细胞移入离心管，1000rpm离心5min。

5.弃上清，用90%培养液+10%DMSO的混合液重悬细胞，并调整细胞密度为1-3×106/ml。

6.将细胞悬液分装到冻存管中(1-1.5ml/管)。

7.将装有细胞的冻存管放入程序降温冻存盒，-20°C放1-2h后，-80°C过夜，然后快速转移到液氮中。